黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应

《黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应》由会员上传分享，免费在线阅读，更多相关内容在应用文档-天天文库。

1、项俊等：黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应509黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应项俊1,2,3，栗茂腾1,2，吴耿1,2，柯宇华3，李为1,2，余龙江1,21.华中科技大学生命科学与技术学院资源生物学与生物技术研究所，湖北武汉430074；2.分子生物物理教育部重点实验室，湖北武汉430074；3.黄冈师范学院生命科学与工程学院，湖北黄州438000摘要：利用植物的化感作用可抑制有害藻类生长，控制水华发生，改善水质。文章在考察黄淮海湿地系统的基础上，选取典型挺水植物菖蒲（Acoruscalamus）和香蒲（Typhala

2、tifolia），用0.1×Hoagland完全培养液进行种植，利用其种植水培养湿地典型水华藻类——铜绿微囊藻（MicrocystisaeruginosaKütz）和鱼腥藻（AnabeanaBory)，研究菖蒲和香蒲的种植水对铜绿微囊藻和鱼腥藻生长的影响，评价挺水植物对水华藻类的化感效应。结果显示：菖蒲种植水对铜绿微囊藻的抑制作用较强；而香蒲种植水对鱼腥藻的抑制作用较强，但是对铜绿微囊藻的生长却有促进作用。结果表明两种挺水植物的种植水都含有影响水华藻类生长的化感物质。进一步的研究表明，两种植物种植水对以上两种藻类生长的影响具有显著的体积比浓度效应

3、。因此，保护和恢复湿地挺水植物群落对改善水环境具有重要作用，但利用挺水植物化感效应进行水体环境净化时，应按水体中有害藻类的类型合理选择植物种类。关键词：化感作用；铜绿微囊藻；鱼腥藻；挺水植物中图分类号：Q948.1文献标识码：A文章编号：1672-2175（2008）02-0506-05项俊等：黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应509随着人类生产、生活活动的加强，大量工业废水和生活污水排入水体，加速了水体富营养化进程，促进了水体中藻类的大量繁殖，从而导致了水华的爆发。我国目前66%以上的湖泊、水库处于富营养化水平，其中重富营养和超富营

4、养的占22%，黄淮海湿地系统中的湖泊如洪泽湖、骆马湖也不例外[1]。湖泊水富营养化是我国目前和今后相当长一段时期内的重大水环境问题[2]；同时也是现今学术界亟待解决的热点问题之一，解决问题的核心是抑制浮游植物的过量生长，即消除藻类[3]。而且大多导致水华的藻类能产生毒素，对动物和人类的健康构成极大威胁[4]。近些年来，通过相生相克(allelopathy)原理即化感作用进行生物防治有害藻类的方法，引起人们的充分关注[5]。Fitzgerald[6]在1969年首次发现水生植物的代谢物能抑制藻类的生长，人们对水生植物抑制藻类生长繁殖产生了极大的兴趣

5、，于是利用水生生物化感效应来抑制藻类生长已有一些研究[7]，例如，孙文浩[8]等研究了水葫芦对藻类的克制效应，证明了水葫芦的根部能向水体分泌某些有机物质，这些物质都能杀死或抑制某些藻类生长，对治理富营养化水体起到重要作用。施丽丽[3]等对黄花水龙的克藻效应进行了研究，证明黄花水龙对藻类生长具有抑制作用。最近的一些研究表明，多种不同生活类型的水生植物对藻类均有化感抑制作用，且已从一些水生植物中分离得到具有抑藻活性的化感物质，并对其抑藻特性和机理开展了初步研究[9]。水生植物的化感作用研究，对于淡水生态系统中水草的可持续管理和湖泊富营养化的生态控制具

6、有非常重要的意义，已经成为湖泊、湿地等生态过程的研究热点[10]。铜绿微囊藻和鱼腥藻是水体富营养化导致水华爆发的最常见藻类[4]。而在实际生态工程中，水生植物与藻类之间的化感作用主要以水为媒介发生相互作用[11]。本文在考察黄淮海湿地系统水环境的前提下，以水体污染的典型藻类铜绿微囊藻和鱼腥藻为对象，研究了生长于洪泽湖湿地中的挺水植物香蒲和菖蒲的种植水对其生长的影响，为黄淮海湿地系统中的湖泊或其他水体富营养化的生态治理提供科学依据。2材料和方法2.1实验材料本试验藻类选择铜绿微囊藻和鱼腥藻藻种取自中国科学院水生生物研究所，香蒲和菖蒲取自位于黄淮海湿

7、地系统中的洪泽湖湿地。2.2实验方法本实验分别采用4LHoagland(0.1×)完全培养液在相同条件下单独培养菖蒲和香蒲均四天，将其种植水通过0.22mm微孔滤膜除菌，取过滤除菌的种植水并稀释成不同体积比浓度后，用于培养项俊等：黄淮海湿地系统典型挺水植物对水华藻类的化感效应509铜绿微囊藻和鱼腥藻。采用水生植物培养种植水和藻类共同培养来进行观察和测定水生植物对藻类的生长影响与实际情况更相近[7]。植物种植水分别占藻类培养液总量的0%、20%、40%、60%、80%和100%，每瓶培养液总量100mL，接种经过一周驯化培养的原始藻液5mL，在(2

8、6±2)℃，光照24h条件下培养，每天摇动三次。在接种后的第1、3、5、7天，于无菌条件下每瓶取出5mL测定其在663nm处的OD值，每