实训三 水产动物病原菌的分离

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1、实训三水产动物病原菌的分离一、实验目的：   熟悉水产细菌性病原的分离、培养、纯化与鉴定的基本方法。二、实验器材：牛肉膏蛋白胨琼脂平板、牛肉膏蛋白胨琼脂斜面、接种环、解剖刀、剪刀、镊子、滴管、纱布、白瓷盘、酒精棉球、灭菌试管、酒精灯、记号笔、恒温培养箱、高压蒸汽灭菌锅。患细菌性疾病的水产动物。三、实验步骤：分离病原菌的材料要求是具有典型患病症状的活的或刚死不久的患病水产动物，病原菌的分离方法如下：1、接种分离体表分离：先将病灶部位表面用70%酒精酒精棉球擦拭消毒或取病灶部分小片或用经酒精灯灼烧的解剖刀烫烧消毒，再用接种环刮

2、取病灶深部组织或直接挑取部分深部患病组织，直接在普通琼脂平板上划线分离。内部组织器官：用70%酒精浸过的纱布覆盖体表或用酒精棉球擦拭，进行体表消毒，无菌打开病鱼的腹腔，以肝、肠、心脏等脏器为材料，先将拟分离病原的部位表面用70%酒精棉球擦拭或用经火焰上灼烧后的解剖刀烫烧，以杀死表面的杂菌，随即在烧灼部位刺一小孔，用灭菌的接种环（待冷2～5秒）伸向烧灼部小洞中，用手指将接种环轻轻旋转两次，借以达到取足材料的目的。鳃部：用无菌接种环刮取鳃上的分泌物划平板。血液及体液：用无菌注射器吸取病鱼血液和体液，滴于平板涂布；或用灭菌后的接

3、种环挑取血液和体液后于平板上划线，分离细菌。划线分离的方法：左手持握普通琼脂平板，并靠近火焰，右手持取材后的接种环在琼脂平板上分区划线接种。划线时接种环面与平板表面成30～40度的角轻轻接触，在平板表面轻快地移动，接种环不应嵌入培养基内，且不要重复，否则形成菌苔。划线完毕，盖上皿盖，接种环灭菌后放下，并在平皿底部用记号笔注明接种材料、日期及操作者代号。也可对实质性脏器用无菌剪刀下一小块，用镊子夹住病料使其剖面接触洁净的玻片，作多个触片，染色后在显微镜下直接镜检，能快速获得结果。2、培养和观察接种后的平板经30℃左右培养24

4、～72h后，检查菌落生长情况，对菌落检查的主要内容包括：（1）大小：其大小以mm表示，微小菌落：针尖大，直径小于0.5mm，如支原体菌落、猪丹毒杆菌菌落；小菌落：直径在0.5～1mm之间，如嗜血杆菌、布氏杆菌菌落；中等大小的菌落：直径在1～3mm之间，如巴氏杆菌、沙门氏杆菌菌落；大的菌落：直径大于3mm，如炭疽芽孢杆菌菌落等。（2）形态：圆形，不规则形（根状、树叶状）。（3）边缘：整齐，不整齐（锯齿状、虫蚀状、卷发状）。（4）表面：光滑、粘液状、粗糙、荷包蛋状、漩涡状、颗粒状。（5）隆起度：隆起，轻度隆起，中央隆起，平升状

5、、扁平状，脐状（凹陷状）。（6）颜色：无色、灰白色、白色、金黄色、红色、粉红色。（7）透明度：透明、半透明、不透明。（8）溶血性：β－溶血（完全溶血），α－溶血（不完全溶血），不溶血。根据菌落数量和特征，挑选可能的病原菌菌落进一步划线纯化1～2次后，将经纯化的可能病原菌用于感染试验。3、病原菌的确定将从患病材料中分离的所有可能病原菌经纯化和扩大培养后分别进行人工感染实验。目前最常用的人工感染接种方法有浸泡、口服和注射法等，究竟选用哪一种方法最合适，需要根据不同的疾病类型和可能的侵入途径而定。如体表的病，可采用浸泡法（包括创

6、伤浸泡）；体内的疾病，可采用口服、注射法。由于绝大部分病原菌都是条件致病菌，因此在人工感染实验时还要注意感染菌的用量，接种量过大，即使该菌并不是引起实验材料致病的病原菌，也可能会因大量菌体裂解释放的大量内毒素而使感染生物死亡，为了量化感染菌的危害程度，可以测定感染细菌对接种动物的半数致死量（LD50），根据LD50的大小来判断其致病力的强弱。只有LD50相对较低、感染引起的死亡与实验材料有相同症状、并且经回接实验还能分离到相同的细菌时，才能确定所分离的细菌为引起实验材料致病的病原。在感染实验时，感染对象要求是没有患病史的同

7、种生物，在感染前要经过1～2周的暂养，感染数量要30尾以上（至少要10尾以上）。必要时，还要将温度控制在适合疾病爆发的水平。感染过程中要定时投饵和换水，同时安排合适的对照组。4、病原菌的鉴定分别观察病原菌的形态以及检测其各种生理生化指标，通过查阅伯杰氏手册确定病原菌的种类；也可直接用细菌鉴定仪测定病原菌的种类。四、结果与报告报告所分离的水产动物病原菌的各种鉴定特征，并查阅相关的细菌鉴定手册初步判断病原菌的种类。