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时间:2018-08-02
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1、Coverslips的清洗方法1.三蒸水浸泡过夜2.硝酸浸泡48小时,硝酸每月更换一次。(18h<时间<72h)3.先用单蒸水冲洗几遍,将表面的硝酸洗去,然后用双蒸水洗8次,在摇床上摇90-100转,1小时换一次水。最好能摇过夜。4.干烤6小时,干烤温度为225度。注:洗玻片这一步很重要,如果洗不彻底,细胞贴壁明显不好,并有聚团现象。洗得过程中,请按照先放水,再放入玻片架,以免玻片互相粘在一起,洗不彻底。换水时用PE手套,每次换水请更换PE手套,如洗的过程中有粘在一起的现象,请用镊子一个一个分开后,再继续洗。5.在超净台,放到
2、无菌培养皿里,封口膜封好6.用0.1mg/ml的PLLcoat玻片,每个玻片100-120ul,过夜放置,60mm加3ml,12孔板加1ml。注:PLL最好不要使用超过1个月。母液浓度1mg/ml,-20℃贮存,工作浓度0.1mg/ml(100ul母液+900ulddH2O)7.种细胞前吸去多赖,用HBSS洗,2ml/well,2-3次。注:没有放coverslips的dish不用洗,直接吹干就好了,30min左右。8.在Hood里自然干燥,不开紫外,紫外线可以分解多赖。Preparation:1)冰盒,解剖工具(1把大剪刀,
3、2把尖镊子,2把尖嘴弯镊)泡在75%的酒精中消毒,100mmdish2个,60mmdish4个,细胞计数板,timer,1大1小两个塑料袋。2)4个60mmdish每个放3ml左右HBSS置冰上,1个100mmdish加入20ml左右DMEM全培置冰上。3)打开37°C水浴,pre-warmHBSS,NB全培,0.25%胰酶(trypsin)学生值日准备工作1预先查看是否有NB液及加B27的NB液2查找并确定共需多少皿神经元,注意孵箱里保顾的待培养的皿,24孔板,6孔板等2确定共需配制多少神经元培养液(即10%HS的全培)3吸
4、去待培养神经元的培养皿中的多赖并回收多赖,晾干4配制神经元培养液,并加于各待培养的皿中,24孔板500ul,96孔板100ul神经元基础培养液:NeurobasalMedium+B27(2%,10ml/500mlNB,避光融化)神经元原代培养种植液50ml:DMEM+HS(5ml,10%)神经元培养液:神经元基础培养液+GlutaMAX(125ul,100X,0.25%)+双抗(1%,P-S,无血清)NB,0.25%trypsin,37℃预热。双抗用前解冻,用量可更少,对细胞毒性会更小Dissection:解剖:取3管-20°
5、C保存的trypsin(500ul)放置冰上溶解。1)从动物房拿怀孕18天母鼠,喷洒70%酒精消毒,沿着腹白线剪开腹腔,取出子宫,放入1个100mmdish。2)剪开子宫,取出胎鼠,剪下头,放入有HBSS的100mmdish中.3)取两把尖嘴弯镊,1把夹住眼窝,固定大脑,另1把镊子沿中轴纵向撕开头皮和头盖骨,用镊子在顶部稍加挤压,取出整个大脑,腹部朝上放入装有HBSS的60mmdish中,每个dish装2到3个大脑。速度要快,血液对神经元有伤害。4)在解剖显微镜下,分离大脑半球,剔除脑膜,分离皮层和海马。大致步骤为取脑组织,解
6、剖后剪碎消化,终止消化离心或静置沉降后弃上清,管底组织团块吹2次后合并上清计数后种植Digestion:1)在超净台,将海马剪成2半,并在35mmdish中加入2ml预热好的0.25%的胰酶(进口),37℃培养箱内消化15min,计时。2)将60mmdish中的皮层剪碎后,加入4ml预热好的0.25%的胰酶(进口),37℃培养箱内消化15min,计时。一般1个60mm皿中最多消化8个皮层(即4个全脑)3)消化结束后加入预热的10%HS(1/4体积于trypsin)略摇晃以终止消化,再加入DNAase(1000X)略摇晃(消化掉
7、破裂细胞的DNA,避免了释放的DNA和蛋白缠结在组织块表面而阻碍进一步消化)。海马:a)消化期间准备3-4个1.5mltube,每只加1ml左右的种植液。b)小心取出dish中消化好的沉淀,加入新的1.5mltube,静置3min,吸出沉淀放入另一个1.5mltube中,共洗2-3遍。c)在最后1个tube中用1ml加样枪轻轻吹打15次左右,静置3min,上清吸入另一空的1.5mltube,离心,1200rpm*3min离去碎片。弃上清,沉淀用种植液重悬混匀。稀释10倍后,进行细胞计数。然后按照要求的密度进行种植。注:吹打时避
8、免产生气泡,胎鼠较小时(<18d)可以多吹打几下。通常一根半侧海马铺一小皿,先接种一皿,显微镜观察。皮层:a)消化期间准备1个15mltube,加2ml左右的全培。b)小心取出dish中消化好的沉淀,加入15mltube中,静置3min,1200rpm*2min离心,轻弃上清
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