荧光定量pcr 法原理汇总

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1、我们前面比较详细地介绍了荧光染料法做定量PCR的有关技术和产品,显然,作为定量PCR的初期阶段的荧光染料法还是有局限性的,比如,由于染料不能区分特异性PCR产物和引物二聚体等非特异产物,也不能区分不同探针,所以检测的特异性始终不如后来出现的探针法;需要在PCR后进行熔链曲线分析;也不能做多重PCR检测(Multiplex)。上个世纪90年代原美国PerkinElmer(PE)公司开发出了Taqman荧光探针定量技术,将定量PCR带入了更广阔的应用空间。Taqman探针法的出现是定量PCR技术的重要里程碑,之后在此基

2、础上发展出了杂交探针法,以及荧光引物法,是对探针法的不断改进和简化。如果希望全面掌握定量PCR技术的研究人员就不能错过这些定量检测技术。要提到荧光探针或者荧光引物,有一个基础概念需要首先明确,那就是荧光共振能量转移(fluorescenceresonanceenergytransfer,FRET):一对合适的荧光物质可以构成一个能量供体(donor)和能量受体(acceptor)对,其中供体的发射光谱与受体的吸收光谱重叠,当它们在空间上相互接近到一定距离(1—10nm)时,激发供体而产生的荧光能量正好被附近的受体吸

3、收,使得供体发射的荧光强度衰减,受体荧光分子的荧光强度增强。能量传递的效率和供体的发射光谱与受体的吸收光谱的重叠程度、供体与受体的跃迁偶极的相对取向、供体与受体之间的距离等有关。定量PCR所涉及的荧光探针和荧光引物的检测都这个FRET原理相关。实时荧光PCR中另一个很重要的概念,即Ct值.C代表循环(Cycle),T代表阈值(Threshold).Ct值是指每个反应管内的荧光信号到达设定的阈值时所经历的循环数.。一般取PCR反应的前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号,荧光阈值的缺省设置是3-15个循环的荧光信号的

4、标准偏差的10倍。研究表明,每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系,起始拷贝数越多,Ct值越小。利用已知起始拷贝数的标准品可做出标准曲线.因此,只要获得未知样品的Ct值,即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。一:水解探针法TaqMan技术原理:除了一对特异性引物,TaqMan探针法增加一条和模版互补的基因特异性探针(通常20—30bp),探针上5'端和3'端分别标记了一个报告荧光基团(供体)和一个淬灭荧光基团(受体),在反应初始(探针完整)时系统激发供体而产生的荧光信号被临近的淬灭基团吸收,所以

5、此时检测不到供体荧光信号;而当PCR过程中TaqDNA聚合酶扩增到探针结合模版的位点时,其5'-3'核酸外切酶的活性(也就是切口平移)切割掉探针5'端的报告基团——游离的报告基团远离淬灭基团,打破能量的传递,激发报告基团产生的荧光信号就可以被荧光检测系统检测到。这样每扩增一条DNA链,就对应有一个游离的荧光分子(报告基团)形成,保证了荧光信号的累积与PCR产物形成完全同步,因此对荧光信号进行检测就可以实时监控PCR的过程,准确定量PCR的起始拷贝数。但是实际上探针较长使得两端基团距离较远,会导致荧光淬灭不彻底,而且

6、淬灭基团也会产生不同波长的荧光,都会使得本底偏高.MGB技术原理:针对Taqman探针荧光淬灭不彻底的问题,2000年美国ABI公司推出了一种新TaqMan探针——MGB探针(minorgroovebinderoligodeoxynucleotideconjugate,MGB-ODN),3'端采用了非荧光性的淬灭基因——淬灭基团吸收报告基团的能量后并不发光,大大降低了本底信号的干扰。此外,MGB探针的3'端还连接了一个二氢环化吲哚卟啉-三肽(dehydrocyclopyrroindoletripetide,DPI3

7、),可以大大稳定探针与模板的杂交,升高探针Tm值,使较短的探针同样能达到较高的Tm值——而短探针的荧光报告基团和淬灭基团的距离更近,淬灭效果更好,荧光背景更低,使得信噪比更高:一个15bp的MGB探针的信噪比大于6,优于理想状态下的25bp的普通Taqman探针(信噪比约为1.5)。允许采用更短的探针也简化了探针的设计和成本。有实验证明MGB探针对于等位基因的区分比较理想,甚至可以检测单碱基突变(因为碱基错配对较短探针的杂交稳定性影响更大)水解探针之所以称之为水解,主要是因为它利用的是Taq酶的水解作用,使得探针上

8、的荧光报告基团远离淬灭基团而发光信号,游离的报告基团数目对应PCR新扩增产物,此方法检测的是积累荧光。优点:灵敏,特异性高:具有模版序列特异的Taqman探针在引物特异的基础上进一步提高的定量PCR的专一性;每扩增一个特异产物只释放一个分子的荧光染料,仪器检测的是特异扩增的结果,非特异产物对检测信号没有影响,有效提高检测的专一性。有多种不同波长的荧光基团对可

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