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时间:2018-07-12
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1、适用于竹林土壤PCR-DGGE分析用的微生物总DNA提取及纯化方法摘要:为了获得完整、高纯度的竹林土壤微生物总DNA,采用改良的十二烷基硫酸钠-高对5种竹林土壤进行DNA提取,通过DNA凝胶回收试剂盒纯化粗提的DNA,利用细菌16SrDNA基因的V3区引物对纯化的DNA进行了聚合酶链式反应-变性梯度凝胶电泳(PCR-DGGE)验证。结果表明,该方法所需土壤样品少,抽提的DNA片段均在23kb以上,完整性好;采用DNA凝胶回收试剂盒纯化能够有效去除粗提DNA中大部分杂质,获得高质量的DNA;以此DNA为模板进行DGGE检测所反映的微生物信息量丰富。变
2、性梯度凝胶电泳(denaturinggradientgelelectrophoresis,DGGE)技术从1993年被引入微生物生态学以来,已经普遍应用于微生物研究,成为微生物群落遗传多样性和动态分析的强有力工具之一[1]。获得样品中所有种类微生物的DNA是应用DGGE技术的前提和关键。然而,来自环境中的样品含有非常复杂的成分,尤其是土壤中的腐植酸类物质很难去除。另外,实际样品中微生物细胞壁的坚实度不同,如不注意就会选择性地获得那些易破细胞壁的微生物DNA,而且有些样品DNA回收率低,造成重复性降低[2]。因此,需要摸索适合具体样品的DNA提取方法
3、。近30a来,国内外在这方面作了大量研究,如Porteous等[3]使用加热-酶-异硫氰酸胍裂解细胞提取总DNA;Zhou等[4]使用蛋白酶K和十二烷基硫酸钠(SDS)破解细胞提取总DNA。这些方法提取的土壤微生物DNA产量高,但杂质也多,其中以腐植酸污染最为严重,直接影响后续聚合酶链式反应-变性梯度凝胶电泳(PCR-DGGE)实验的准确性。鉴于此,人们又尝试许多方法去除腐植酸的影响,如He等[5]使用磷酸盐缓冲液预洗土壤后再提取DNA,Dong等[6]尝试采用Al2(SO4)3去除土壤DNA中的腐植酸,获得良好效果。目前,针对竹林土壤微生物总DN
4、A提取以及利用PCR-DGGE分析竹林土壤微生物群落多样性的研究还未见报道。笔者拟在以往研究的基础上,通过摸索和改进[4,7-8],建立一种适应于竹林土壤PCR-DGGE分析用的DNA提取和纯化方法,为进一步研究竹林土壤微生物群落结构和多样性打下良好的基础。1材料和方法1.1材料实验土样于2007年8月取自浙江林学院吉永竹园。分别采集了雷竹Phyllostachyspraecox,紫竹Phyllostachysnigra,刚竹Phyllostachyssulphurea,龟甲竹Phyllostachysheterocycla和黄秆乌哺鸡Phyllo
5、stachysvivax等5种竹林的土壤,采样深度为0~10cm,按五点法采样,四分法混匀放入保鲜袋中,封口后,带回实验室,4℃保存。1.2竹林土壤微生物总DNA提取方法1.2.1粗提首先按照Zhou等[4]报道的SDS高盐抽提法(简称常规法)提取了5种竹林土壤微生物的总DNA,作为对照。采用的改良SDS高盐抽提法(简称改良法)参照常规法修订而成,即在高盐提取液中添加石英砂,以反复冻融代替水浴破碎细胞,并且在氯仿-异戊醇抽提过程增加了NaCl/CTAB(十六烷基三甲基溴化铵)溶液2次抽提的步骤。具体操作如下:称取1.0g土壤样品,与4.5mLDNA
6、提取缓冲液(Tris-HCl100mmol·L-1,EDTA100mmol·L-1,Na3PO4100mmol·L-1,NaCl1.5mol·L-1,10.0g·kg-1CTAB,pH8.0)混合,加少许石英砂,于230r·min-1摇床上37℃摇动30min;随后加入0.5mL200g·kg-1SDS,混合物于65℃水浴20min(每隔10~15min轻轻上下颠倒几次),-80℃冷冻15min,反复冻融2次。室温6000r·min-1离心10min,收集上清,加入1/10体积65℃预热的NaCl/CTAB溶液(100g·kg-1CTAB,0.7m
7、ol·L-1NaCl)和等体积的氯仿-戊醇,轻摇混匀,室温下10000r·min-1离心6min,吸取上层水相。重复抽提1~2次,吸取水相转移至新离心管中,加入0.6倍体积的异丙醇,室温沉淀15min,10000r·min-1离心10min收集核酸沉淀。用体积分数为70%乙醇洗涤2次,室温风干,用200μLTE缓冲液(10mmol·L-1Tris-HCl,1mmol·L-1EDTA,pH8.0)溶解沉淀,4℃保存。1.2.2DNA的纯化采用DNA凝胶回收试剂盒纯化粗提DNA。具体操作与试剂盒说明略有差异:将粗提的DNA与溶液Ⅰ以3∶1混合,室温放置
8、10min,然后将混合液加入到回收柱中,静置2min,离心。用0.5mL体积分数为75%乙醇清洗2次,最后用100μLTE
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