家兔呼吸运动的调节 - 副本

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1、2012/9/21温度：31°C湿度：75%家兔呼吸运动的调节2012级内科学—XXX2012010133[摘要]目的观察血液中Pco2，Po2和[H+]改变对家兔呼吸运动（呼吸频率、节律、幅度）的影响，观察迷走神经在家兔呼吸运动调节中的作用方法通过增大无效腔，增大CO2分压，缺氧，快速注射2%乳酸，先后切断迷走神经，采用MedLab生物信号采集处理系统记录家兔的呼吸曲线观察呼吸运动的改变情况。结果增大无效腔，增加CO2分压，快速注射乳酸后，可使家兔通气量、呼吸频率及平均呼吸深度明显增加；剪断一侧迷走神经对呼吸运动影响不大，剪断双侧迷走神经，呼吸变深变慢。结

2、论机体通过呼吸调节血液中的O2、CO2、H+水平，动脉血中O2、CO2、H+的变化又通过化学感受器调节呼吸，迷走神经加速吸气向呼气转换，使呼吸频率增加，参与维持机体内环境的相对稳定。方法：手术分离家兔气管,迷走神经,分离剑突关键词：呼吸运动、调节前言呼吸是由呼吸肌的节律性收缩完成的，呼吸肌受呼吸中枢的节律性活动所控制。呼吸中枢通过支配膈神经和肋间神经，引起呼吸肌兴奋，从而产生呼吸运动。但是体内外的某些化学因素可以通过作用于中枢和外周的化学感受器，反射性地影响呼吸运动。血液中PO2，PCO2，H+浓度的改变可以刺激中枢和外周化学感受器，产生反射性调节作用，其目

3、的是保证血液中气体分压和PH值得稳定。一．实验材料（1）动物：家兔（2）器械：动物手术器材（手术刀、手术剪、止血钳、玻璃分针,丝线，注射器，兔台），Y型气管插管，30cm的胶管，体重秤，呼吸换能器，电刺激连线，MedLab生物信号采集处理系统（3）药品和试剂：3%戊巴比妥钠、CO2气体、2%乳酸、N2气体。二．实验方法（1）麻醉固定 家兔称重后，耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1ml/kg。待兔麻醉后，将其仰卧，前肢背部向下交叉，先后固定四肢及兔头。（2）手术 剪去颈前部兔毛，沿正中线切开皮肤5～7cm，纵向分离皮下组织和肌层，暴露颈部气管及其两侧的左、右颈总动脉

4、鞘，在气管下穿一根粗棉线备用。在甲状软骨下约1cm处，做倒“T”形切口，气管插管由剪口处向肺端插入，注意气管插管应避免损伤气管粘膜引起出血，插管后结扎固定。再用玻璃分针分离双侧迷走神经，穿线备用。同样以手术的方式游离剑突，连接张力换能器。（3）开启计算机采集系统，启用MedLab生物信号采集处理系统，选择“呼吸运动调节”实验并进行相关实验参数的设置，开始记录。附实验操作图：三．实验观察项目1．描记正常呼吸曲线：记录一段正常呼吸运动曲线作为对照。辨认曲线上吸气、呼气的波形方向(下列每一实验项目前必须先等待呼吸曲线恢复正常)。2．观察吸入气中CO2含量增加对家兔

5、呼吸运动的影响：同上法用CO2气囊，使吸入的空气中含有较多的CO2，观察与记录呼吸运动。3．观察缺O2对家兔呼吸运动的影响：使用N2气囊，给动物吸入含有较高浓度N2气的空气以造成部分缺O2，观察与记录呼吸运动的变化。4．观察增大无效腔对家兔呼吸运动的影响：将长胶管接至气管插管开口处使家兔无效腔增大，观察与记录呼吸运动的变化。5．耳缘静脉缓慢注入2%乳酸溶液1ml，使血液中[H+]增加，观察血液酸碱度改变对家兔呼吸运动的影响。6.观察在家兔吸气末打气对家兔呼吸系统的影响：使用20ml的注射器吸取大约7ml空气在家兔吸气末端往Y型气管插管的一端打入，Y型插管的另

6、一端应提前夹壁，并要维持一定的时间。7.观察在家兔呼气末抽气对家兔呼吸系统的影响：操作方法与家兔吸气末打气类似，但应注意的是在抽气前注射器应排空气体8.观察迷走神经在呼吸运动调节中的作用：分别观察和记录切断右侧迷走神经和切断两侧迷走神经以后呼吸运动的变化。9.在切断家兔的两侧迷走神经下，重复家兔在吸气末打气和呼气末抽气对呼吸系统的影响。操作方法与6.7相同。四，实验结果。图（1）正常呼吸曲线图（2）吸入CO2的呼吸曲线图（3）缺氧的呼吸曲线图（4）增大无效腔的呼吸曲线图（5）注入乳酸的呼吸曲线图（6）吸气末打气图（7）呼气末抽气图（8）剪断一侧迷走神经图（9

7、）剪断两侧迷走神经图（10）剪断迷走神经后吸气末打气图（11）剪断两侧迷走神经后呼气末抽气五，实验讨论 1、CO2浓度增加使呼吸运动加强CO2是调节呼吸运动最重要的生理性因素，它不但对呼吸有很强的刺激作用，并且是维持延髓呼吸中枢正常兴奋活动所必须的。每当动脉血中PCO2增高时呼吸加深加快，肺通气量增大，并可在一分钟左右达到高峰。由于吸入气中CO2浓度增加，血液中PCO2增加，CO2透过血脑屏障使脑脊液中CO2浓度增多，CO2十H2O→H2CO3  → HCO3-＋H+  CO2通过它产生的H+刺激延髓化学感受器，间接作用于呼吸中枢，通过呼吸机的作用使呼吸运动

8、加强，此外，当PCO2增高时，还刺激主动脉体和颈动脉