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时间:2018-07-08
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1、仙鱼汤对小鼠Lewis肺癌的作用研究论文.freelg·kg-1·d-1),荷瘤模型组;计算各组小鼠平均瘤体质量及抑瘤率;制备单细胞悬液,采用流式细胞仪检测各组小鼠LeL,中剂量组2.184g/mL,高剂量组4.368g/mL,分别相当于临床等效剂量的1、2、4倍。制备后于4℃冰箱中贮存备用。环磷酰胺(CTX)注射用粉针剂为山西普德药业有限公司产品(批号:20060206),200mg/支,临用前用生理盐水溶解,稀释浓度为2mg/mL,根据CTX的半数致死量(LD50)为472mg/kg,注射用量为LD50的1/3~
2、1/5,故小鼠给药剂量设为20mg·kg-1·d-1。1.4主要试剂与仪器碘化丙啶(PI)染液为晶美生物工程有限公司产品;bcl2兔多克隆抗体、即用型过氧化物酶免疫组织化学染色(SABC)试剂盒(SA1022)均为博士德生物工程有限公司产品;RPMI1640培养基为Gibco公司产品;二甲苯、乙醇,均为市售分析纯;超净工作台(苏净集团安泰公司);冷冻桌面离心机(Eppendorf5810RCentrifuge);解剖显微镜(北京电子光学设备厂);37℃电热恒温水浴箱(上海恒丰仪器仪表有限公司);ALTRA型流式细
3、胞仪(美国Beckmancoulter公司);CSⅣ型烤片机(孝感市电子仪器厂);亿鸣200病理图像分析系统(中国亿鸣)。1.5LeL瘤细胞。消毒小鼠右前腋,取0.2mL(约1×106~2×106个瘤细胞)接种于皮下。传代3次。在无菌条件下剥离LeL(约1×106~2×106个瘤细胞)。1.6分组及给药接种24h后随机分为5组:仙鱼汤高剂量组(剂量为1.747g/kg)、仙鱼汤中剂量组(剂量为0.874g/kg)、仙鱼汤低剂量组(剂量为0.437g/kg)、CTX阳性对照组(剂量为20mg/kg)、荷瘤模型组。中
4、药各组均予以0.4mL中药灌胃,CTX组予以0.2mL腹腔注射,荷瘤模型组予以0.4mL生理盐水灌胃,均每日1次,给药14d。1.7观察指标及检测方法1.7.1小鼠生活状态观察实验过程中观察小鼠的饮食、毛发、活动、精神状态等情况。1.7.2抑瘤率末次给药后24h,Le实验组/m模型组)×100%。1.7.3细胞周期分析及细胞凋亡检测取小块瘤组织,加入生理盐水洗净血迹后倒掉,再加入1mL生理盐水,用眼科剪剪碎组织,吸管轻轻吹打,过300目筛,收集单细胞悬液于流式专用管,加入2mL中性磷酸盐缓冲溶液(PBS),1300r
5、/min离心5min洗涤2次,调整细胞计数约1×106/mL,加入体积分数70%冰乙醇2mL吹打后封口固定,保存于4℃冰箱24h。将固定的单细胞悬液离心,去固定液,加入PBS重新悬浮,洗涤2次,300目筛网过滤1次,加入1mLPI染液(终浓度100mg/L),4℃避光染色30min,流式细胞仪检测,收集50000个细胞,应用multicycle软件分析凋亡率[5]。1.7.4病理检查肿瘤组织经体积分数10%福尔马林固定24h后常规石蜡包埋,4μm厚连续切片,苏木素-伊红(HE)染色,光镜观察肿瘤生长、肿瘤坏死、间质反
6、应和肿瘤及肿瘤周围组织炎症细胞浸润情况并摄片。1.7.5bcl2阳性表达检测采用免疫组化法。常规石蜡包埋后,4μm厚连续切片,行SABC法免疫组织化学染色,用PBS液代替一抗做阴性对照。光学显微镜下观察,bcl2蛋白染色细胞浆呈棕黄色为阳性。在高倍镜视野(400)下随机计数5个视野。计算出各组的染色强度指数(stainingintensityindex,pSII)。pSII=(pA强度瘤细胞×0)+(pB强度瘤细胞×1)+(pC强度瘤细胞×2)+(pD强度瘤细胞×3)。其中A强度代表细胞浆无特异性染色;B强度代表
7、细胞浆呈特异性浅棕黄色,染色较浅;C强度代表细胞浆呈特异性棕黄色;D强度代表细胞浆呈特异性深棕色,染色较深。染色强度指数(pSII)的范围在0~3[6]。1.8统计学分析采用SPSS11.5统计软件处理。2结果2.1一般状况的观察实验结束后,模型组、CTX组小鼠表现为身体瘦小,活动少,喜聚群,毛发缺少光泽;CTX组小鼠于实验5~7d开始出现脱毛,进食减少;仙鱼汤高、中、低剂量组小鼠脱毛现象少于CTX组及模型组,活动力优于CTX组及模型组。2.2各组抑瘤率比较表1结果表明,仙鱼汤高、中、低剂量组及CTX组瘤体质量均低于
8、模型组(P<0.05或P<0.01)。各仙鱼汤组随着药物剂量的增大,瘤体质量逐渐减轻,抑瘤率逐渐增高。表1各组Leormassorinhibitoryrateindifferentgroups统计方法:单因素方差分析;①P<0.05,②P<0.01,与模型组比较2.3各组细胞凋亡率及细胞周期分析仙鱼汤高、中、低剂量组及CTX组小鼠Leeter
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