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时间:2018-05-05
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1、大鼠肝细胞与Kupffer细胞共同培养对两者功能和形态影响:寇晨光曹成波燕晓雯罗兵周岩冰【摘要】目的观察大鼠肝实质细胞与Kupffer细胞体外共同培养时对两者生长、形态及功能的影响。方法采用原位二步Ⅳ型胶原灌注法、Percoll液密度梯度离心法分离I1640完全培养基购于中国医学科学院生物医学工程研究所;Ⅳ型胶原酶、2.5g/L胰酶、锥虫蓝均购于美国Sigma公司;Percoll液购自于北京华美公司;考马斯亮蓝G250、谷丙转氨酶(ALT)试剂盒、谷草转氨酶(AST)试剂盒均由杭州博日生物技术有限公司提供;125I肿瘤坏死因子
2、α(TNFα)放射免疫分析试剂盒、125I白细胞介素1(IL1)放射免疫分析试剂盒、125I白细胞介素6(IL6)放射免疫分析试剂盒均购自北京普尔伟业生物科技有限公司。 1.2方法 1.2.1肝细胞及Kupffer细胞的分离本文参照SMEDSROD等[5]方法加以改良分离收集肝细胞,利用Percoll液密度梯度离心法收集Kupffer细胞。 1.2.2肝细胞和Kupffer细胞的培养及观察单独培养组调整肝细胞密度至1.5×108/L并接种到培养皿,置于含体积分数0.05CO2孵箱,在37℃、100%湿度条件下培养,
3、12h后更换新鲜培养液。共同培养组将肝细胞按1.5×108/L的细胞密度、Kupffer细胞按2.5×107/L细胞密度(6∶1)共同接种于培养皿,置于含体积分数0.05CO2孵箱,在37℃、100%湿度条件下培养,12h后更换新鲜培养液。每培养12h更换培养液并吸取上清液用全自动生化检测仪检测清蛋白、ALT、AST、IL1、IL6、TNFα,并观察细胞形态及生长情况。 1.2.3检测指标采用考马斯亮蓝G250方法测定清蛋白,采用ELISA法分别检测上清液中ALT、AST、IL1、IL6及TNFα含量。 1.3统
4、计学处理 采用PPMS1.5软件[6]进行统计学处理,数据以±s表示,组间比较用两样本均数t检验。 2结果 2.1形态学观察 倒置显微镜下,新分离的大鼠肝细胞晶莹透亮,呈圆球形,折光性强,有立体感。台盼蓝染色计数显示健康肝细胞的比例平均为92%。同时,新分离的Kupffer细胞胞浆透亮,多呈圆球形,少数呈多形性,散在分布,大小不一致,约6h后,细胞开始伸展,体积增大,48h后细胞充分展开,呈典型的星形或多边形,边界不清。在单独培养组,肝细胞的生长、增殖较共同培养组的细胞迅速,接种4h后肝细胞贴壁、伸展,连接成条索状;24h
5、后绝大多数肝细胞贴壁,呈扁平状,体积明显增大;48h后肝细胞贴壁牢固,细胞开始增殖,细胞间出现岛状连接,部分肝细胞呈双核;72h后肝细胞开始增殖,在原来肝细胞周围出现透明且体积较小的上皮样细胞,呈多边形,逐渐铺满培养皿底;10d后培养液的上清中悬浮细胞逐渐增多,细胞开始大量死亡;至培养15d时细胞全部死亡。在共同培养组,24h后绝大多数肝细胞贴壁,呈扁平状,体积增大;肝细胞生长增殖缓慢,于96h即开始出现少量的死亡细胞漂浮,至培养10d时细胞基本全部死亡。 2.2功能测定 共同培养组清蛋白水平在24、36、48、60h低于于单
6、独培养组(t=2.551~3.139,P<0.05);共同培养组ALT、AST水平在24、36、48、60h明显高于单独培养组(t=2.446~3.108,P<0.05);培养36h后,共同培养组上清液中IL1为(0.17±0.03)μg/L,IL6为(0.03±0.01)μg/L,TNFα为(39.73±5.26)pmol/L,而单独培养组未检测到上述细胞因子。见表1~3。 表1各组大鼠肝细胞上清中清蛋白水平比较(ρ/g·L-1,±s)组别n24h36h48h60h单独培养组60.679±0.0450.556
7、±0.0300.535±0.0440.536±0.044共同培养组60.548±0.059*0.472±0.057*0.468±0.047*0.477±0.033*与单独培养组比较,*t=2.551~3.139,P<0.05。 表2各组大鼠肝细胞上清中ALT水平比较(z/U·L-1,±s)组别n24h36h48h60h单独培养组682.40±4.1882.90±2.6080.90±4.1682.80±2.92共同培养组689.90±3.69*86.90±2.62*87.20±3.50*89.80±4.65*与单独培养组比较
8、,*t=2.666~3.108,P<0.05。 表3各组大鼠肝细胞上清中AST水平比较(z/U·L-1,±s)组别n24h36h48h60h单独培养组6142.20±5.54140.50±6.44150.60±4.42149.50±3.94
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