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时间:2018-02-27
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1、BlueNativePAGE一.实验原理:BlueNativePAGE(BN-PAGE)是HermannScha¨gger1991年创立的一种从生物样品(质膜,胞浆等)中分离蛋白质复合物的电泳技术。能分离10KD-10MKD范围内的蛋白质以及蛋白质复合物。BN-PAGE以考马斯亮蓝G-250代替SDS使蛋白质复合物带负电荷,根据各个不同复合物分子量不同从而在胶中得到分离。这些复合物在胶中以蓝色条带形式呈现。样品用一些温和的去污剂如dodecylmaltoside(DM),TritonX-100和毛地黄皂苷(digitonin)等溶解,从而使复合物以近似天然的状态分离。实验中若想进一步分
2、析复合物各个亚基的成分,通常采用BN-PAGE结合SDS-PAGE的方式.实验结果如下图所示。二实验需要用到的试剂:咪唑(Imidazole),6-氨基乙酸(6-Aminohexanoicacid),聚丙烯酰胺(Acrylamide(twice-crystallized)),甲叉双丙烯酰胺.(Bis-acrylamide(twice-crystallized)),20%(W/V)TritonX-100,20%(W/V)dodecylmaltoside(DM),20%(W/V)digitonin,甘油,5%(W/V)G-250(CoomassieblueG-250),巯基乙醇(.Merc
3、aptoethano),过硫酸铵(AP),TEMED,氯化钠三溶液的配置AB-3mix:称48gacrylamide加入大约50mL的ddH2O中,搅匀后定容至100mL,再加入1.5gbisacrylamide,混匀,三层滤纸过滤后置于棕色瓶中保存。5%G-250溶液:0.5gG-250,0.6559g6-氨基乙酸溶于10毫升水中电极缓冲液和凝胶缓冲液的配方见表1样品溶解液的配方见表2分离胶和浓缩胶的配方见表3四实验流程:1.灌胶选择合适的玻璃板,用洗涤剂反复擦洗玻璃板,再用自来水反复冲洗,最后用双蒸水漂洗,自然晾干或者用吹风机吹干。隔条以同样的方法洗干净以后,自然晾干或用滤纸吸干。
4、将玻璃板卡入隔条中,短板对负极置于电泳槽中,用1%的琼脂糖封胶。将电泳槽放在4度冰箱中冷却。按照表上所列的方法配好不同浓度的分离胶,用梯度混合仪灌胶。灌完胶后,用水饱和的正丁醇封住胶面,等待凝胶聚合。大约30分钟后,凝胶的表面出现两个界面,分离胶已经聚合,去掉表面的正丁醇层和水层,再用双蒸水冲洗胶面,直到没有正丁醇的味道为止。用滤纸小心的吸干胶面。按照表中的方法配好浓缩胶,灌胶,插入梳子,等待凝胶聚合。2样品处理不同的样品有不同的处理方法。现在以海马突触质膜为例讲解样品处理方法。从-20度冰箱里取出一管用1.5mLEP管装着的海马突触质膜样品,置于37度水浴锅中使其快速溶解。溶解后加入
5、表二所示的solutionbufferA溶液,加到EP管最大刻度处。18000g冷冻离心20分钟,弃上清,取沉淀。称沉淀的重量。按照detergent/protein=3:1的比例加入20%TritonX-100溶液,使TritonX-100的终浓度为2%,用Tip头小心混匀样品,注意不能有气泡,冰上裂解30分钟。然后18000g冷冻离心20分钟,收集上清,测蛋白含量。取出120微克的样品,加入3微升5%G-250溶液和5微升50%的甘油,混匀后即可上样。所有操作均在冰上进行。3电泳将处理好的样品用微量进样器点在上样孔中以后,倒入1ⅹ负极液和正极液,插好电源,以恒压100V开始电泳,待
6、样品跑过浓缩胶后,电压改为250V,之后可以慢慢增大,到样品最后跑完。只要控制电流在50毫安以内即可。待样品跑到凝胶的1/3处更换负极液,将原来1ⅹ负极液换成1/10ⅹ,这样可以降低胶的背景。负极液的配方见表一。电泳过程如下图所示:4固定和染色当样品跑完整个凝胶后,剥胶,固定和染色。这个过程和普通的SDS胶一样。即用固定液(50%ddH2O,40%甲醇,10%乙酸)固定30分钟后,水洗4次,15分钟一次。然后在考染液中染色过夜。5脱色,扫描染色过夜后,倒掉考染液,用双蒸水脱色,到背景十分干净为止,扫描。如果不要分析复合物各个亚基的组分,就可以直接拿BlueNative胶切胶,酶解后质谱
7、鉴定。若还想进一步分析复合物各个亚基的组成,则还要做二向SDS-PAGE。五二向SDS-PAGE操作过程1灌胶选择合适的玻璃板,洗干净后按照上述方法灌胶。SDS-PAGE30%凝胶储液,分离胶buffer,浓缩胶buffer的配制见实验室自编教材《蛋白质组学核心技术实践指南》,凝胶浓度根据样品特性选择合适的浓度,凝胶浓度与其对应的分离范围见表3.1。本实验室常用的分离胶的浓度为11.5%,浓缩胶的浓度为4.8%,配方如下:11.5%分离胶4.8
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