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时间:2020-08-15
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1、MTT原理、步骤、结果分析方法及注意事项一、MTT原理MTT全称为3-(4,5)-dimethylthiahiazo(-2)-3,5-diphenytetrazoliumromide,汉语化学名为3-(4,5-二甲基噻唑-2)-2,5-二苯基四氮唑溴盐,商品名:噻唑蓝。是一种黄颜色的染料。MTT比色法,是一种检测细胞存活和生长的方法。其检测原理为活细胞线粒体中的琥珀酸脱氢酶能使外源性MTT还原为水不溶性的蓝紫色结晶甲瓒(Formazan)并沉积在细胞中,而死细胞无此功能。二甲基亚砜(DMSO)能溶解细胞中的甲瓒,用酶联免疫检测仪在490
2、nm波长处测定其光吸收值,可间接反映活细胞数量。在一定细胞数范围内,MTT结晶形成的量与细胞数成正比。该方法已广泛用于一些生物活性因子的活性检测、大规模的抗肿瘤药物筛选、细胞毒性试验以及肿瘤放射敏感性测定等。它的特点是灵敏度高、经济。缺点:由于MTT经还原所产生的甲瓒产物不溶于水,须被溶解后才能检测。这不仅使工作量增加,也会对实验结果的准确性产生影响,而且溶解甲的有机溶剂对实验者也有损害。二、MTT溶液的配制方法通常,此法中的MTT浓度为5mg/mL。因此,可以称取MTT0.5g,溶于100mL的磷酸缓冲液(PBS)或无酚红的培养基中,
3、用0.22μm滤膜过滤以除去溶液里的细菌,放4℃避光保存即可。在配制和保存的过程中,容器最好用铝箔纸包住。实验的时候我一般关闭超净台上的日光灯来避光,觉得这样比较好。需要注意的是,MTT法只能用来检测细胞相对数和相对活力,但不能测定细胞绝对数。在用酶标仪检测结果的时候,为了保证实验结果的线性,MTT吸光度最好在0-0.7范围内。MTT一般最好现用现配,过滤后4ºC避光保存两周内有效,或配制成5mg/mL保存在-20ºC长期保存,避免反复冻融,最好小剂量分装,用避光袋或是黑纸、锡箔纸包住避光以免分解。我一般都把MTT粉分装在EP管里,用的
4、时候现配,直接往细胞培养板中加,没必要一下子配置那么多液体,尤其当MTT变为灰绿色时就绝对不能再用了。MTT有致癌性,用的时候小心,有条件最好使用透明的一次性乳胶手套.配成的MTT需要无菌环境,MTT对微生物很敏感;往96孔板加时不避光也没有关系,毕竟时间较短,或者你不放心的时候可以把操作台上的照明灯关掉.配制MTT时用PBS(pH=7.4)溶解。PBS配方:Nacl8g+Kcl0.2g+Na2HPO41.44g+KH2PO40.24g调pH为7.4,定容1.0L。三、普通MTT法实验步骤:1:接种细胞。用含10%胎小牛血清得培养液配成
5、单个细胞悬液,以每孔1000-10000个细胞接种到96孔板,每孔体积200uL。2:培养细胞。同一般培养条件,培养3-5天(可根据试验目的和要求决定培养时间)。3:呈色。培养3-5天后,每孔加MTT溶液(5mg/mL用PBS配制,pH=7.4)20uL.继续孵育4h,终止培养,小心移除孔内培养上清液,对于悬浮细胞需要离心后再吸弃孔内培养上清液。每孔加150uLDMSO,振荡10min,使结晶物充分融解。4:比色。选择490nm波长,在酶联免疫监测仪上测定各孔光吸收值,记录结果,以时间为横坐标,吸光值为纵坐标绘制细胞生长曲线。四、药物M
6、TT法实验步骤:A:贴壁细胞:1:收集对数期细胞,调整细胞悬液浓度,每孔加入100uL,铺板使待测细胞调密度1000-10000孔(边缘孔用无菌PBS填充)。2:5%CO2,37℃孵育,至细胞单层铺满孔底(96孔平底板),加入浓度梯度的药物,原则上,细胞贴壁后即可加药,或两小时,或半天时间,但我们常在前一天下午铺板,次日上午加药。一般5-7个梯度,每孔100uL,设3-5个复孔。建议设5个,否则难以反应真实情况。3:5%CO2,37℃孵育16-48小时,倒置显微镜下观察。4:每孔加入20uLMTT溶液(5mg/mL,即0.5%MTT),
7、继续培养4h。若药物与MTT能够反应,可先离心后弃去培养液,小心用PBS冲2-3遍后,再加入含MTT的培养液。5:终止培养,小心吸去孔内培养液。6:每孔加入150uL二甲基亚砜,置摇床上低速振荡10min,使结晶物充分溶解。在酶联免疫检测仪OD=490nm处测量各孔的吸光值。7:同时设置调零孔(培养基、MTT、二甲基亚砜),对照孔(细胞、相同浓度的药物溶解介质、培养液、MTT、二甲基亚砜)。B:悬浮细胞:1:收集对数期细胞,调节细胞悬液浓度1×106/ml,按次序将①补足的1640(无血清)培养基40uL;②加ActinomycinD(
8、有毒性)10uL用培养液稀释(储存液100mg/mL,需预试寻找最佳稀释度,1:10-1:20);③需检测物10uL;④细胞悬液50uL(即5×104cell/孔),共100uL加入到96孔板(边缘孔用无菌
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