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时间:2020-07-30
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1、说到WesternBlotting,估计所有技术员都会联想到蓝底上的黑色条带,或者是仪器扫描的白底黑条图片。经过了漫长的实验流程,得到的会是清晰的、符合实验理论的完美结果,或者更多的是其他让自己略感失望的结局。比起其他分子生物学实验,WesternBlotting实验似乎更加冗长、更加考验技术,从实验准备,到最后曝光结果,任何一个步骤的丝毫疏忽,结果可能就差之千里。在这里,BioTNT我先放下之后繁琐复杂的操作步骤,和大家聊聊WesternBlotting实验基础中的基础——制胶。不要小看制胶这件小事哦!Western实验是从电泳跑胶开始的(之前的样本处理算在实验
2、准备里哈),因此电泳跑胶的质量直接影响到最终的实验结果,其中,聚丙烯酰胺凝胶的质量起到了决定性的作用。 要是在制胶时出现了瑕疵,会有怎样的结果呢?好不容易配好的分离胶在凝固时居然只剩下了一半!没法用了,只能重制!那你一定是个新手,漏胶什么的最容易出现了。曝光结束,发现条带不在同一水平线上,原本应在同一kDa值的条带却上上下下如同波浪线一般,好吧,那这块儿胶在配制的时候一定不匀。悲剧,从头开始吧!还是在曝光结束,发现在垂直方向上有那么一小条出现了空白(或者说是黑色曝光细斑),不巧的,影响到了目的条带。嗯,那就是你在制胶的时候混了那么一点儿小气泡进去,蛋白们在跑胶时碰
3、到气泡都绕道啦!继续的,曝光结束,发现目的条带和非特异条带挤作一团,难舍难分,没法作为数据,这种情况比较复杂,可能原因是电泳时间不够,抗体质量不佳,样本中的蛋白过量,etc. 但是,你有没有想过,可能是你选错了胶的浓度?还有诸如胶不凝、曝光条带大小不均、拔泳梳时坏胶、上样电泳时样本溢出等等问题,可能都与你制胶的小细节有问题哦! 怎么样,小瞧了制胶,吃大亏了吧!还是好好的、严肃的来看待制胶这个问题吧! 说到这个制胶,很多的少年们还不知道制的是什么胶吧(啊喂,前面说了,是聚丙烯酰胺凝胶啦!)?,在分子生物学实验中,常用的电泳胶有两种:琼脂糖凝胶以及聚丙烯酰胺凝胶。这两
4、个凝胶有什么区别呢?咳咳,本质区别啊!琼脂糖凝胶电泳是用琼脂糖作支持介质的一种电泳方法。其分析原理与其他支持物电泳最主要区别是:它兼有“分子筛”和“电泳”的双重作用。其孔径相当大,现广泛应用于核酸的研究中。也就是说,琼脂糖凝胶,可以区分的是电荷量,以及大分子量的物质。着重介绍一下我们的聚丙烯酰胺凝胶,他是聚丙烯酰胺聚合交联向成的具有网状立体结构的凝胶,并以此为支持物进行电泳。在电泳前,通过向样品加入还原剂(打开蛋白质的二硫键)和过量SDS(阴离子去垢剂),使蛋白质变性解聚,并与蛋白质结合成带强负电荷的复合物,掩盖掉蛋白质之间原有电荷的差异,使各种蛋白质的电荷/质量
5、比值都相同,因而在聚丙烯酰胺凝胶中电泳时迁移率主要取决于蛋白质分子大小。也就是说,聚丙烯酰胺凝胶,可以区分的是分子量相对较小的物质。 那么,聚丙烯酰胺凝胶里到底有些什么成分呢?首先要说明的是,电泳时的聚丙烯酰胺凝胶其实是由两块(或者以上)不同浓度的聚丙烯酰胺凝胶组合而成的,他们分别称为浓缩胶及分离胶,浓缩胶是4%聚丙烯酰胺凝胶,主要作用是将样本在上样时的高度差缩小,使得所有的蛋白能够处在同一起跑线上,进而得到更美观、更科学的数据。在部分实验室,并不用浓缩胶,这一做法不值得提倡哦!分离胶是真正的分子筛,通过聚丙烯酰胺形成的立体孔道,对不同分子量大小的蛋白进行分离。在
6、一些实验室,分离胶选用的是梯度胶,即为使用不同浓度的胶依次叠加,所得到的胶分离效果更佳,不过,制胶的步骤多了,失败的可能性也大大增加哦!对于新手来说绝不推荐! 分离胶和浓缩胶中的成分基本相同,都是由以下这些组成:超纯水、聚丙烯酰胺、Tris盐酸、SDS、AP、TEMED。分别来说说它们的作用吧!超纯水:…不说了聚丙烯酰胺:由丙烯酰胺(简称Acr)和交联剂N,N’一亚甲基双丙烯酰胺(简称Bis)按一定比例混合而成,分子筛作用,分离不同分子量大小的蛋白。顺便一提哦,丙烯酰胺是剧神经毒哦!操作时候可要特别当心啊!聚丙烯酰胺毒性相对较小,但是还是注意些吧!Tris盐酸:缓
7、冲液,保证胶的pH值正常。SDS:十二烷基硫酸钠,阴离子去垢剂,打断蛋白质的氢键和疏水键,并按一定的比例和蛋白质分子结合成复合物,使蛋白质带负电荷的量远远超过其本身原有的电荷,掩盖各种蛋白分子间天然的电荷差。AP:过硫酸铵,催化剂,加速聚丙烯酰胺形成立体结构,即加速凝胶。TEMED:N,N,N’,N’四甲基乙二胺,催化剂,加速聚丙烯酰胺形成立体结构,即加速凝胶。 在了解了这么多基本知识之后,我们终于可以制胶了吧!嘿,不!慢着!先想想,我们要制多少浓度的胶呢?不同的聚丙烯酰胺浓度所产生的分子筛作用不同,对之后的实验也会产生影响。常见的聚丙烯酰胺凝胶浓度有:8%、10
8、%、12%
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