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时间:2019-10-31
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1、附件食品中去甲基他达拉非和硫代西地那非的测定高效液相色谱—串联质谱法BJS2017041.范围本标准规定了食品(含保健食品)基质中去甲基他达拉非和硫代西地那非的高效液相色谱—串联质谱测定方法。本标准适用于酒、牡蛎粉等食品(含保健食品)中去甲基他达拉非和硫代西地那非的测定。其他低糖、低脂、低蛋白类基质可参照本方法定性检测。2.原理试样经甲醇超声提取,过滤后,滤液供高效液相色谱—串联质谱测定,外标法定量。3.试剂和材料注:水为GB/T6682规定的一级水。3.1试剂3.1.1乙腈(C2H3N):色谱纯。3.1.2甲酸(HCOOH):色谱纯。
2、3.1.3甲醇(CH3OH):分析纯。3.2试剂配制3.2.10.1%甲酸水溶液:取甲酸1mL用水稀释至1000mL。3.2.20.1%甲酸乙腈溶液:取甲酸1mL用乙腈稀释至1000mL。3.3标准品去甲基他达拉非、硫代西地那非对照品或标准物质的中文名称、英文名称、CAS登录号、分子式、相对分子量见附录A表A.1,纯度≥98%。3.4标准溶液配制3.4.1标准储备液(500μg/mL):分别精密称取去甲基他达拉非、硫代西地那非(3.3)各10.0mg,用甲醇溶解并稀释至20mL,摇匀,制成浓度为500μg/mL标准储备液,-20℃保存,
3、保存期1个月。3.4.2混合标准中间工作液(1μg/mL):分别准确吸取去甲基他达拉非、硫代西地那非标准储备液(500μg/mL)(3.4.1)各0.1mL,用甲醇稀释至50mL,摇匀,制成1μg/mL的混合标准中间工作液,-20℃保存,保存期1个月。3.4.3混合标准工作溶液:分别吸取混合标准中间工作液(1μg/mL)(3.4.2)0.1mL、0.2mL、0.4mL、1.0mL、2.0mL于10mL容量瓶中,用甲醇定容至刻度,摇匀,作为系列混合标准工作溶液S1—S5,浓度依次为各化合物10μg/L、20μg/L、40μg/L、100μ
4、g/L、200μg/L,临用新制或依仪器响应情况配制适当浓度的混合标准工作溶液。1.仪器和设备4.1高效液相色谱—串联质谱仪,配有电喷雾(ESI)离子源。4.2天平:感量分别为0.1mg和1mg。4.3超声波发生器。2.分析步骤5.1试样制备5.1.1固态试样取适量混匀,研细,称取1g试样(精确至0.01g)于具塞试管中,加入甲醇10mL,密塞,称重,超声提取10min,放冷,再次称重,用甲醇补足减失的重量,摇匀,用滤膜(0.22μm,有机相型)过滤,取续滤液,根据实际浓度适当稀释至标准曲线线性范围内,备用。5.1.2液态试样取适量摇匀
5、,吸取1.0mL于具塞试管中,加入甲醇9mL,密塞,称重,超声提取10min,放冷,再次称重,用甲醇补足减失的重量,摇匀,用滤膜(0.22μm,有机相型)过滤,取续滤液,根据实际浓度适当稀释至标准曲线线性范围内,备用。5.1.3空白试验不加试样按试样同法处理,制得空白溶液。称取与试样等量的空白基质试样,按试样同法处理,制得空白基质试样溶液,备用。5.2仪器参考条件5.2.1色谱条件a)色谱柱:WatersCORTECST3(2.1×100mm,2.7µm),或性能相当者。b)流动相:A为0.1%甲酸水溶液(3.2.1),B为0.1%甲酸
6、乙腈溶液(3.2.2),梯度洗脱程序见表1。c)流速:300μL/min。d)柱温:30℃。e)进样量:1μL。表1梯度洗脱程序表梯度时间/min流动相A/%流动相B/%09010190104604071090910909.19010129010注:在有共流出成分影响目标化合物检测时,可以适当调节流动相比例,使尽可能与干扰成分分离,减少干扰。5.2.2质谱条件a)离子源:电喷雾离子源(ESI源)。b)检测方式:多反应离子监测(MRM)。c)干燥气、雾化气、鞘气、碰撞气等均为高纯氮气或其他合适气体,使用前应调节相应参数使质谱灵敏度达到检测
7、要求,毛细管电压、干燥气温度、鞘气温度、鞘气流量、喷嘴电压、碰撞能量、碎裂电压等参数应优化至最佳灵敏度,监测离子对和定量离子对等信息详见附录B。5.3定性测定按照高效液相色谱—串联质谱条件测定试样和标准工作溶液,记录试样和标准溶液中各化合物的色谱保留时间,当试样中检出与某标准品质量色谱峰保留时间一致的色谱峰(变化范围在±2.5%之内),并且试样色谱图中所选择的监测离子对的相对丰度比与相当浓度标准溶液的离子相对丰度比的偏差不超过表2规定的范围,可以确定试样中检出相应化合物。表2定性确证时相对离子丰度的最大允许偏差相对离子丰度(k)k>50
8、%50%≥k>20%20%≥k>10%k≤10%允许的最大偏差±20%±25%±30%±50%5.4定量测定5.4.1标准曲线的制作将混合标准工作溶液(3.4.3)分别按仪器参考条件(5.2)进行测定,得到
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