动物生理实验课件Bhy

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1、动物生理学实验指导教师：白华毅授课专业：动科、动医、水产云南农业大学动物科学学院动物生理学常用器械一.蛙类手术器械1．探针：用于破坏脑和脊髓。2．粗剪刀：用于剪骨、肌肉、皮肤等较粗硬组织。3．眼科剪；用于剪神经、血管等细软组织。4．外科镊：用于夹捏组织和牵提切口处的皮肤。5.眼科镊：用于夹捏细软组织。6．玻璃分针：用于分离神经和血管等。7．蛙板：用于固定蛙类。二.哺乳类手术器械8．玻璃板：用于制备神经肌肉标本。1.注射器：用于注射药液。2．剪毛翦：用于术部剪毛。3．手术刀：用于切割皮肤、肌肉和脏器。4．止血钳：除用于止血外，有齿的用于提起皮肤，无齿的用于

2、分离皮下组织。5．外科镊：用于夹捏较大或较厚的组织，牵拉皮肤切口。6．外科剪：用于剪皮肤、皮下组织、肌肉等。7．眼科剪：用于剪血管、神经。8．眼科镊：用于捏和分离神经、血管等。9，骨钳：用于咬切骨质。10.骨剪；用于剪切骨质。11.颅骨钻：用于钻孔开颅12.持针钳：用于夹持缝合针。13.缝合针、线：用于缝合皮肤、肌肉脏器等。动物生理学实验动物常用酌麻醉药物动物生理学实验动物常用酌麻醉药物动物生理学实验动物常用酌麻醉药物常用的给药方法1.经口投药法（口服、灌服）2.注射给药法（皮下、肌肉、腹腔、静脉）常用的动物麻醉方法及注意事项1.全身麻醉：吸入、注

3、射2.局部麻醉：点眼、注射麻醉注意事项1、麻醉前应正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。2、密切观察动物麻醉状态及反应，以便准确判断麻醉深度。3、如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需补充麻醉药以维持适当的麻醉。一次补充药量不宜超过原总用药量的五分之一。4、麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意保温。5、在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。6、实验中注意液体的输入量及排出量，维持体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。实验一血液的组成[实验目的]了解血液的组成，区别血浆、血清及纤维蛋白。[实验原理]

4、血液是由液态的血浆和悬浮于血浆中的血细胞组成。在血液中加一定量的抗凝剂柠檬酸钠或草酸钾，使血液抗凝，由于血细胞比重略大于血浆，静置或经过离心，将出现分层。上面无色（或淡黄色）透明的部分为血浆，下面红色部分为红细胞，在红细胞之上有一薄层灰白色部分为白细胞和血小板。下部压紧的血细胞占全血的体积比称为红细胞压积，又叫红细胞比容。若不加抗凝剂任血液自然凝固或去纤维蛋白，就可区别血清、血块及纤维蛋白。[材料及用具]鸡，新鲜血，抗凝血，离心管，离心机，小试管刷，烧杯，试管架，试管，天平。[方法及步骤]制备抗凝血:常用的抗凝剂为3.8%柠檬酸钠，其用量：1ml血需5m

5、g柠檬酸钠→10ml血→50mg柠檬酸钠。（计算50mg柠檬酸钠相当于多少毫升3.8%柠檬酸钠）100：3.8g=x：50mg100：3800mg=x：50mgx=(100×50)÷3800≈1.32柠檬酸钠抗凝机理：柠檬酸钠与血中的钙离子结合，形成可溶化物而抗凝。其优点是毒性低。[方法及步骤]1．取抗凝血（1毫升血液加柠檬酸钠5毫克；或1毫升血液加草酸钾2毫克）10毫升（如抗凝血放置过久，还须将其充分摇匀），置于有刻度的离心管中。将离心管放入电动离心机中，以每分钟3000转的速度旋转20—30分钟，使血细胞完全沉于管底，然后取出离心管观察，其上层为血浆

6、，底层为压紧的深红色的红细胞，中间一白色薄层为白细胞和血小板。2．取新鲜血50毫升放在小烧杯中，用小试管刷搅动数分钟后，取出试管刷，可见试管刷上有许多丝状物缠绕，此即为纤维蛋白。用水冲洗后，观察其颜色及韧性。脱去纤维蛋白的血液称“去纤维蛋白血”。3．取“去纤维蛋白血液”10毫升，依1法离心后，上层为血清，下层为血细胞。观察其颜色及透明度。4．取新鲜血10毫升置试管中，静置片刻。则见有凝固现象发生，浑浊的血变为一条血凝块(凝块称血块)，血块回缩，周围有清亮的液体析出，该液体为血清。为加速此过程，可先离心几分钟或略加温。[注意事项]使用离心机时，应用天平称量

7、使离心机旋转轴两侧相应的两个套筒及其内容物的总重量相等。开动离心机应由慢而快，使转速逐渐达到3000转/分，停止时应由快而慢逐渐停止。要求与思考题1.血浆与血清有哪些区别？2．写出实验报告，该实验报告采用画图法最直观。实验二血红蛋白的测定[实验目的]熟悉用比色法测定血红蛋白的方法。[实验原理]血红蛋白测定的方法有多种，最常用而最简单的是比色法。由于血红蛋白的颜色，常随结合的氧量多少而改变，因而不利于比色，但血红蛋白与稀盐酸作用后，能使亚铁血红素变成不易变色的棕色的高铁血红蛋白，用水稀释后可与标准比色板比色，从而测得血红蛋白含量。通常以每100毫升血液中血

8、红蛋白的克数来表示。[材料及用具]血红蛋白计，抗凝血，吸血管，滤纸，1/10N盐