痰检实验室操作规程

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1、痰检实验室操作规程一、检查程序　　（一）痰标本收集：在三个痰标本盒上注明病人的姓名、编号、检查日期和容器序号。病人首次留痰前应指导病人，留取“即时痰”、“夜间痰”、“晨痰”合格的痰标本，对所送不合格痰标本除常规检查外，应要求患者重新送检，合格的痰标本包括干酪痰、血痰、粘液痰。唾液或口水用于病人确诊时为不合格痰标本，标本量一般在3～5ml。（二）痰涂片制作：1、检查前对新的玻片用95%的乙醇擦拭脱脂，经干燥、清洁、检查无油污、无划痕后作为合格的玻片备用。在已经准备的痰玻片背面左端的1/3处注明编号，挑取痰标本中可疑部分约0

2、.05～0.1ml，于玻片正面右侧2/3处，均匀涂抹成10×20mm的卵圆形痰膜。2、痰膜朝上静置自然干燥后(一般约需要30分钟)进行染色镜检。当气温低，痰膜不易干燥时，严禁将玻片直接在火焰上烘拷，以防产生气溶胶或痰膜脱落。一张载玻片上只能涂抹一份痰标本，一张载玻片只能使用一次，不得清洗后再次用于痰涂片染色检查。　　3、涂抹完毕后的痰标本，在检查结果报告前，应暂时保留。以备涂片、染色不合格影响镜检结果时，重新涂片和染色之用。4、萋－尼氏染色油镜检查.　　（三）实验室登记：按照年度病人序号和痰标本序号在实验室登记本上进行登

3、记，并以同样的号码在痰涂片检查单上进行标记。检验单的病人姓名应与实验室登记本一致。　　（四）痰涂片检查结果登记与报告：及时在登记本上登记痰涂片检查结果。当病人的三次痰涂片检查完成后，发现有阳性痰涂片，应在规定时间内报医院防保科，县级结核病防治机构再对痰涂片进行确认。　　（六）痰涂片的保存：每个查痰点镜检后的全部痰涂片应按实验室登记本序号连续排列，分别存放在各点固定的玻片盒中，供上级实验室复核确认。　　（七）痰检质量控制：每个痰涂片检查点均按照中国结核病防治规划《痰涂片镜检质量保证手册》的要求，作为一个独立的被质控单位接受

4、室间质量评估和检查工作。　　　　二、萋－尼氏染色　　1、涂片自然干燥后，放置在染色架上，玻片间距保持在10mm以上的距离；火焰固定(在5秒钟内将玻片置于火焰上来回烘烤4次)。2、滴加石碳酸复红染液，盖满痰膜，火焰加热至出现蒸汽后，脱离火焰，保持染色5分钟。染色期间应始终保持痰膜被染色液覆盖，必要时可续加染色液。加温时勿使染色液沸腾。　　3、流水自玻片一端轻缓冲洗，冲去染色液，沥去标本上剩余的水。4、自痰膜上端外缘滴加脱色剂布满痰膜，脱色1分钟；如有必要，需流水洗去脱色液后，再次脱色至痰膜无可视红色为止。5、流水自玻片一端

5、轻缓冲洗，冲去脱色液，沥去玻片上剩余的水。6、滴加亚甲蓝复染液，染色30秒钟。7、流水自玻片一端轻缓冲洗，冲去复染液，沥去标本上剩余的水。待玻片干燥后镜检。一张染色合格的痰玻片，由于被亚甲蓝染色而呈亮蓝色。将染色后的玻片放置在报纸上，如果报纸上的文字透过痰膜不能被看清，表明该玻片涂抹过厚。　　三、显微镜检查1、使用10倍目镜双目显微镜读片。2、取染色完毕且已干燥的玻片，痰膜向上放置在玻片台上并以卡尺固定。首先使用40倍物镜，转动卡尺移动玻片至痰膜左端，将光线调节至适当亮度，调节焦距至可见细胞形态；移开40倍物镜，在玻片上

6、滴1～2滴镜油，使用100倍油镜进行细致观察。在淡蓝色的背景下，抗酸菌呈红色，其他细菌和细胞呈蓝色。为防止抗酸杆菌的交叉污染，严禁镜头直接接触玻片上的痰膜。3、读片方法：首先应从左向右观察相邻的视野；当玻片移动至痰膜一端时，纵向向下转换一个视野，然后从右向左观察，依此类推。通常10×20mm大小的痰膜，使用100倍油镜，每行可观察100个视野，观察三行则约为300个视野。仔细观察完300个视野，一般至少需要5分钟以上。油镜观察，可见单个存在的，也能看到聚集成簇或分枝状排列的菌体，染色良好痰标本，可见菌体内着色较深的异染颗

7、粒。　　四、镜检结果报告与登记　　痰涂片镜检的结果报告，不仅是对结核病的诊断提供依据，报告的数量也一定程度的反映疾病严重程度和传染性的大小。痰涂片镜检结果的登记应按照镜检结果的分级报告标准登记在结核病细菌学实验室登记本上和痰检验单上。不能只填写阴性、阳性或(－)、(+)等。萋尼氏染色镜检结果分级报告标准抗酸杆菌阴性(－)：连续观察300个不同视野未发现抗酸杆菌。报告抗酸杆菌菌数：1～8条/300视野。抗酸杆菌阳性（1＋）：3～9条/100视野。抗酸杆菌阳性（2＋）：1～9条抗酸杆菌/10视野。抗酸杆菌阳性（3＋）：1～9

8、条抗酸杆菌/每视野。抗酸杆菌阳性（4＋）：≥10条抗酸杆菌/每视野。五、抗酸染色玻片的处理阅读完萋尼氏染色玻片后，应立即用浸满二甲苯（分析纯）的擦镜纸揭取数次，彻底去除玻片上的镜油。经脱油干燥后的玻片，按实验室序号及涂片编号放置在玻片盒中，存放在阴凉干燥的环境中，以备复检或质控抽检。六、痰涂片抗酸染色检查注意事项