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1、辅助生殖技术中优选精子精液处理ok3in,如超过30min仍不液化称为精液不液化症[1],提示精浆成分异常,常因附属腺病变引起前列腺液与精囊液比例失调或成分发生变化所致,异常的精浆对精子是不良的生存环境,故在排出精液后应尽快促进精液液化,继而使精子与精浆分离。常用的促进精液液化的方法是在每ml精液中加糜蛋白酶4000IU或将精液反复通过18号或19号针头加压推出[2].如效果不好,可用培养液与精液1:1稀释后用吸管反复吹打,直至液化。1.2精子优选处理方法1.2.1上游法(s-up)是一种常用的精液处理技术
2、,主要用于精液质量较好和“相对正常”的精液,利用活动精子的游动能力,即能游过液体界面进入不同的培养液,从而自行与死精子、凝集精子、白细胞及杂质分离。根据上游前有无离心操作分为直接上游法和离心上游法。直接上游法:将含10%的血替代物(SPS,SageBiopharma)的拟人输卵管液(mHTF)2ml加入圆底试管,在试管底缓慢加入液化精液1ml,精液量较多时可多用几支试管,使两层之间形成界面,将试管倾斜45°,置于37℃、5%CO2培养箱内孵育40——60min,取出试管,吸出上清液的中上层呈云雾状的液体,移
3、入离心管,离心200g×6min,弃上清液,取精子团加上述培养液0.5ml制成精子悬液备用[3].离心上游法:即改良上游法,将液化精液与新鲜培养液1:1混匀后,移入离心管,离心200g×5min,弃上清液,取沉淀按上述方法上游处理。上游法是目前推荐的方法,因为在整个处理过程中除了培养液,不含其他的化学物质[4].其不足是运动精子回收率低,回收率依赖于精子细胞团表面积和精子活动力,由于细胞团有多层细胞,有潜在运动能力的精子可能处在细胞团内部,不能达到与培养基接触的界面。为提高回收率,可采用少量多管直接上游,以
4、增加精液与培养基的总界面。Al-Hasani等[4]建议采用每管精液和培养基(1:1——3)总量<1ml的微型上游技术(mini-s-up),仔细移出75%——80%的上层培养基,即可增加正常活动精子数量,又不增加精子DNA的损伤,可用于优选处理较严重的少弱畸精子,用于ICSI.1.2.2梯度离心法(densitygradientcentrifugation)适用于大多数的精液样本,对粘度大及明确有抗精子抗体的精液样本尤为有效,并且该方法可同时有效去除碎片和白细胞[5].分为连续梯度离心法和不连续梯度
5、离心法。连续梯度离心法:取90%密度梯度液1ml置于离心管底部,然后将液化的精液1.5——2ml加在其上。注意保持二者界面的清晰,当精液量大于2ml时,可多用几支离心管。离心300g×15min,当精液黏稠度较高或精子密度较低时,可适当延长离心时间10——20min.去除离心管上部的精浆和密度梯度液,小心收集底部的精子沉渣,在离心管中加入3——5ml培养液,重新混悬精子,离心200g×6min,弃上清,根据需要调整授精液体积,并重新混悬置培养箱备用。不连续梯度离心法:取2ml80%密度梯度液加入到一支离心管
6、底部,再沿管壁缓慢加入2ml40%密度梯度液,保持两液体之间有清晰的界面。在两液体上面缓慢加入已液化的精液1.5ml,保持与40%密度梯度液之间的界面清楚。离心300g×15min,当精液黏稠度较高或精子密度较低时,可适当延长离心时间10——20min.去除离心管上部的精浆和密度梯度液,小心收集底部的精子沉渣,将其移入一新离心管中,加入10ml培养液,重新混悬精子,离心200g×6min,弃上清,根据需要调整授精液体积,重新混悬精子沉渣,置培养箱备用。密度梯度法处理后的精子,与直接采集的精子[6]以及上游法
7、处理得到的标本[7]相比,其畸形精子的比例明显降低。Sakkas等[8]报道,密度梯度离心法可分离出DNA断裂的和染色体浓缩差的精子。Erel等[9]认为,异常精子经密度梯度离心法处理后,得到精子的顶体反应率、低渗肿胀实验阳性率和核成熟的精子比例均优于上游法。1.3玻璃纤维过滤法玻璃纤维具有滤过作用,精液以一定的速率通过时,可以清除精液中的不活动的精子、其他细胞及杂质,特别是对黏滞性较大的标本,可除去大量的凝集精子,增加精子的活动率。该方法是将一定数量的玻璃纤维填入一长约12cm的Pasteur吸管,用培养
8、液反复冲洗滤过,直到滤过液中无玻璃纤维碎屑存在。将Pasteur吸管垂直固定与试管架上,将液化的精液加在玻璃纤维柱的顶端,在其下用一个无菌的玻璃容器收集滤出的精液。收集的精液中虽然损失相当多的精子,但滤过的标本几乎保留了所有的活动精子,可以显着提高活动精子及有完整功能性细胞膜精子的百分率,对精子质量差的精液分离效果更佳,可除去大约90%的白细胞。此外,该法还明显提高精子染色体的完整性,可作为ICSI精子处理的首选
