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时间:2018-07-15
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1、T栽使用说明Q-1:TA克隆的原理?大部分耐热性DNA聚合酶进行PCR反应时都会在PCR产物的3′末端添加一个“A”,T载体是3′带有一个“T”的载体,在连接酶作用下,完成连接,其连接液可以直接用于细菌转化,大大方便了实验操作。TA克隆的原理请见下图:Q-2:蓝白斑筛选的原理?蓝白斑筛选原理是:载体上携带一段细菌的lacZ基因,它编码β-半乳糖苷酶的一段146个氨基酸的α-肽,载体转化的受体菌为lacZ△M15基因型。这样,载体同宿主通过互补,具有完整的β-半乳糖苷酶的活性。如果在载体的lacZ基因中插入外源DNA,造成lac
2、Z基因缺失,不能合成α-肽,失去同宿主的互补,不能形成有功能的β-半乳糖苷酶,失去分解X-gal的能力。在X-gal平板上,含阳性重组体的细菌为白色菌落(质粒载体)或无色噬菌斑(M13噬菌体载体);非重组体转化的细菌为蓝色菌落或蓝色噬菌斑。Q-3:Takara有哪些常用的PCR产物克隆用T载体,各有什么特点?常用的PCR产物克隆用T载体及各自的特点请见下表:CodeNo.产品特点应用3275pBackZero-TVectorCloningKit由pUC19改建,阳性克隆率极高而背景极低。它消除了pUC19载体上的lacZ基因及
3、多克隆位点,并对β-lactamase(bla)基因进行了独特的改造,可以定向克隆。使用时需在待插入的DNA片段的上、下游Primer的5′端加上TTTAA5个碱基。如果需要进行定向克隆,只需在一条引物的5′端加上TTTAA5个碱基。PCR产物3′端有“A”,TA克隆。6011pMD™18-TVectorCloningKit由pUC18构建,含有多克隆位点,可以进行蓝白筛选,无方向性克隆。PCR产物3′端有“A”,TA克隆。6013pMD™19-TVectorCloningKit由pUC19构建,含有多克隆位点,可以进行蓝白筛
4、选,无方向性克隆。PCR产物3′端有“A”,TA克隆。3271T-VectorpMD™19(Simple)由pUC19构建,不含有多克隆位点,可以进行蓝白筛选,无方向性克隆。PCR产物3′端有“A”,TA克隆。根据实验需要,可以在引物的5'端导入酶切位点。6012pSIMPLE-19 EcoRV/BAPVector由pUC19构建,不含有多克隆位点,是种平末端去磷酸化载体,可以进行蓝白筛选,无方向性克隆。与5′端磷酸化的平末端PCR产物进行连接。3270T-VectorpMD™20由pUC19构建,含有多克隆位点;并对lacZ
5、基因进行改造,降低假阳性,可以进行蓝白筛选,无方向性克隆。PCR产物3′端有“A”,TA克隆;含有SP6Promoter,可以对插入的DNA进行体外转录。Q-4:pMD19-TVector与pMD18-TVector相比,有何不同?pMD19-TVector与pMD18-TVector相比,β-半乳糖苷酶的表达活性更高,菌落显示蓝色的时间缩短,菌落显示的蓝色更深。pMD18-TVector连接转化后,一般要经37℃过夜培养,然后再将其于冰箱内放置一段时间后,其蓝白菌落才能显色。而pMD19-TT栽使用说明Vector涂板培养后
6、一般只需10个小时(37℃)便可以显色。因此,pMD19-TVector比pMD18-TVector更适合于蓝白菌落的筛选。Q-5:使用Takara的T载体,对感受态细胞有什么要求?转化时请使用高效的感受态细胞(转化效率≥1×108 cfu/μgpUC19),这样才可能得到比较理想的阳性克隆。如果需要进行蓝白筛选时,宿主细胞必须具有正确的基因型(F′编码的[lacZ△M15])产生ωFragment,才可能和载体DNA产生的lacZα多肽相结合,表现出β-半乳糖苷酶活性(α-互补性),才可以进行蓝白筛选。通常使用的JM109,
7、DH5α等细胞均可进行蓝白筛选。Q-6:使用Takara的T载体,对InsertDNA有什么要求?使用Takara克隆用T载体,对InsertDNA有以下的要求:1.InsertDNA应该进行切胶回收的纯化处理后才进行载体连接,尽量避免引物等其它杂质的存在。切胶回收时可使用Takara凝胶回收试剂盒(CodeNo.9762)。2.InsertDNA的使用量及计算方法。进行克隆时,VectorDNA和InsertDNA的摩尔数比一般为1:3~10,可以根据具体的实验情况选择合适的VectorDNA和InsertDNA的摩尔数比。
8、InsertDNA使用量的计算方法如下:InsertDNA的使用量(ng)=nmol数×660×InsertDNA的bp数Takara的T载体1μl(50ng)的摩尔数约为0.03pmol。Q-7:如何计算感受态细胞的转化效率?取0.1ng的pUC19PlasmidDNA加入
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